Промежуточные хозяева многокамерной гидатидозной болезни

Резюме

Представлены данные многолетних исследований по обнаружению промежуточных хозяев многокамерной гидатидозной болезни, вызываемой альвеолярным эхинококком.

Цель исследования - изучение территориального распространения личиночной формы альвеолярного эхинококкоза Центральной России и спектра промежуточных хозяев возбудителя гидатидоза.

Материал и методы. Материалом для исследований служили трупы, тушки, отдельные органы и ткани грызунов. Поимку животных проводили охотники, зоологи, биологи - исследователи окружающей среды. Тушки животных собирали из живоловок, мышеловок, капканов и ям. Микромаммалий исследовали посмертно методом полных и частичных гельминтологических вскрытий по К.И. Скрябину. На секционном столе у грызунов детально исследовали печень и легкие. Органолептически и инструментально изучали состояния паразитарных гидатидозных кист.

Результаты. Изучено 238 микромаммалий 9 семейств 15 видов. Единственную кисту альвеолярного эхинококкоза Echinococcus multilocularis обнаружили в 2022 г. у речного бобра (Castor fiber). Животное добыто на водоеме Калужской области Медынского района (♂, возраст 5-6 лет). Экстенсивность инвазии по представленному хозяину составила 0,91%. Альвеолярная гидатида весила 22 г. Диаметр дочерних кист варьировал от 0,2 до 1,0-1,5 см. Паразитарные кисты Cysticercus fasciolaris в количестве 1-2 экземпляров обнаружены в печени 1 серой крысы и 5 ондатр. Неблагополучие по инвазии C. fasciolaris отмечено в Шиловском и Касимовском районах Рязанской области. Экстенсивность инвазии составила 4,1 и 13,8% соответственно. Физиологическое состояние кист соответствовало жизнеспособным. Единичный подвижный сколекс в кисте имел размер от 1 до 5 см.

Заключение. Паразитарные кисты E. multilocularis выявляют у 5 видов грызунов в Центральном регионе России, в том числе у речного бобра (C. fiber). Чаще всего метацестоды обнаруживают в печени животных. Результаты мониторинговых исследований эпизоотического процесса зоонозных гельминтозов среди грызунов необходимо учитывать при разработке профилактических мероприятий, в том числе при гидатидозной болезни.

Ключевые слова:гидатидозная болезнь; метацестода; грызуны; Echinococcus multilocularis

Финансирование. Исследование не имело спонсорской поддержки.

Конфликт интересов. Автор заявляет об отсутствии конфликта.

Для цитирования: Андреянов О.Н. Промежуточные хозяева многокамерной гидатидозной болезни // Инфекционные болезни: новости, мнения, обучение. 2023. Т. 12, № 2. С. 29-33. DOI: https://doi.org/10.33029/2305-3496-2023-12-2-29-33

Многокамерный гидатидоз - опасный биогельминтоз, вызываемый паразитированием личиночной формы цестоды Echinococcus multilocularis. Возбудитель многокамерного гидатидоза относится к семейству Taeniidae, подотряду Taeniata, классу Cestoidea, типу плоских червей Plathelminthes.

Биологический цикл развития альвеококка схож с развитием эхинококка [1]. Его развитие связано со сменой двух хозяев. Окончательными хозяевами альвеококка являются плотоядные животные. В кишечнике хищников паразитирует ленточная стадия (стробила, имаго, до 1,5 мм). Промежуточными хозяевами являются представители отряда мышевидных грызунов. Заражение окончательных хозяев происходит при поедании грызунов, пораженных личиночной формой альвеококка. В кишечнике окончательного хозяина из протосколексов развиваются взрослые паразиты. Заражение промежуточных хозяев происходит в результате проглатывания онкосфер или зрелых члеников. В пищеварительном тракте промежуточного хозяина онкосферы освобождаются от наружной оболочки, внедряются в толщу слизистой оболочки, проникают в кровеносные или лимфатические капилляры, оседают в печени. В паренхиматозном органе личинки формируются в ларвоцисты (паразитарные кисты) и вызывают гидатидозную болезнь. Рост личинок цепня осуществляется путем экзогенного отпочковывания пузырьков, прорастающих печеночную ткань подобно злокачественной опухоли. Ларвоциста паразита, как правило, из-за короткого срока жизни грызуна, оказывается фертильной. Она характеризуется наличием двух оболочек, содержанием прозрачной жидкости, протосколексов, дочерних ацефалоцист и гидатидозного песка [1, 2].

В научной литературе отсутствуют сведения о наличии природных очагов альвеолярного эхинококкоза в европейском регионе России. Природные очаги инвазии существуют в ряде регионов РФ (Республика Саха, Алтайский, Красноярский и Хабаровский края, Томская и Омская области) [1, 3, 4]. Имеются лишь отрывочные сведения о дефинитивных хозяевах гельминта, а о промежуточных хозяевах цепня данных практически нет.

Цель исследования - изучение территориального распространения личиночной формы альвеолярного эхинококкоза Центральной России и спектра промежуточных хозяев возбудителя гидатидоза.

Материал и методы

Мониторинговые исследования по наличию паразитарных альвеолярных гидатид рода Echinococcus у грызунов проводили на территории Центрального региона России в течение 2010-2022 гг. Материал для исследований (трупы, тушки, фрагменты органов и тканей грызунов) личиночной формы цестоды E. multilocularis доставляли из 7 областей 9 районов региона (см. таблицу).

Отлов и поимку животных проводили охотники, зоологи, биологи - исследователи окружающей среды. Тушки животных собирали из живоловок, мышеловок, капканов, ловчих канав и ям. Изъятие биологического материала с территории охотохозяйств проводили на основании разрешительных сезонных лицензий. Мелких микромаммалий и подвергшихся частичному разложению исследовали на месте. Транспортную доставку крупных грызунов в лабораторию паразитологии осуществляли при охлаждении или замораживании биологического материала. Условно инвазированный материал фиксировали в физиологическом растворе, 70% этаноле или 4% формалине. Видовую принадлежность грызунов определяли по классическим определителям [5, 6].

Микромаммалий исследовали посмертно методом полных и частичных гельминтологических вскрытий по К.И. Скрябину (1928) [2, 7]. На секционном столе у грызунов детально исследовали печень, легкие, селезенку, сердце, головной мозг, крупные лимфатические узлы и другие внутренние органы. При визуальном осмотре и инструментальном вскрытии изучали физиологическое состояние паразитарных гидатидозных кист (фертильные, стерильные, обызвествленные). При микроскопии регистрировали наличие оболочек метацестод и сколексов. Жизнеспособность протосколексов цепня фиксировали при прогревании их на столике Морозова в 0,9% стерильном растворе нария хлодида.

Исследования ларвальных форм цестод проводили с соблюдением мер личной безопасности и мер, исключающих диссеминацию инвазионных форм паразитов [8]. После исследования биологический материал подвергали стерилизации автоклавированием в вертикальном аппарате модели Sanyo MLS-3781 (Южная Корея) в течение 2 ч при давлении 1,3 атм. Утилизацию стерильного материала проводили на Подольской опытно-производственной базе с помощью инсенератора "ИУ-50". Дифференциально-диагностические исследования проводили в аттестованной лаборатории ФГБНУ "ФНЦ ВИЕВ" РАН (лицензия № 77.99.03.001.L.000067.08.13 28.08.2013).

Рассчитывали показатель экстенсивности инвазии.

Результаты и обсуждение

Изучено 238 микромаммалий. 224 исследованных грызунов отнесли к 6 семействам (беличьи, бобровые, зайцевые, мышиные, тушканчиковые, хомяковые) и 10 видам. 14 насекомоядных животных отнесли к 3 семействам (ежовые, землеройковые, кротовые) и 5 видам.

Единственную кисту альвеолярного эхинококкоза E. multilocularis в 2022 г. обнаружили у речного бобра (Castor fiber). Животное добыто на водоеме в Калужской области Медынского района (♂, возраст 5-6 лет). Экстенсивность инвазии по представленному хозяину составила 0,91%. Альвеолярная гидатида гельминта весила 22 г. Киста прорастала изнутри центра правой внутренней доли печени в сторону кишечной брюшины. Диаметр дочерних кист варьировал от 0,2 до 1,0-1,5 см. Наружные слои (кутикулярный и герминальный) кисты обызвествлены. Нерастворимые соли пропитали мягкие оболочки ларвоцисты. Жидкость кисты прозрачная, находилась под давлением (заметно при разрезе), содержала незначительное количество нерастворимых солей Са2+. Осадок гидатидозной жидкости серо-желтого цвета. Жидкость содержала гидатидозный песок, дочерние ацефалоцисты и протосколексы. Большинство зародышевых капсул и сколексов (около 90%) находились на разных стадиях обызвествления. Единичные морфологически нормальные и просвечивающиеся сколексы при нагревании до 40 °С вывернулись и проявляли пассивные движения.

В исследованном биологическом материале были обнаружены паразиты - возбудители других гельминтозов. В печени 1 серой крысы и 5 ондатр выявлены паразитарные кисты Cysticercus fasciolaris в количестве 1-2 экземпляров, диаметром до 0,8 см. Неблагополучие по данной инвазии отмечено в Шиловском и Касимовском районах Рязанской области. Экстенсивность инвазии составила 4,1 и 13,8% соответственно. Цепень Taenia taeniaeformis часто выявляют в кишечнике хищников семейства кошачьих (Felidae) и псовых (Canidae) [9]. Грызуны относительно часто являются промежуточными хозяевами цестоды Taenia taeniaeformis (Cysticercus fasciolaris). Физиологическое состояние выявленных первичной и дочерних паразитарных кист соответствовало критериям жизнеспособности. Гидатидозная жидкость в первичной кисте локализовалась при отсутствии давления. Единичный подвижный сколекс в кисте имел длину 1-5 см.

По данным научной литературы общее число промежуточных хозяев альвеолярного гидатидоза достигает 61 вида. До настоящего времени кисты многокамерного гидатидоза E. multilocularis были определены у 52 видов грызунов, 5 видов насекомоядных животных и 4 видов приматов, в том числе у человека [1]. Значимыми облигатными промежуточными хозяевами остаются полевки, в том числе представители семейства хомячковых [1, 2, 4, 10]. В биологическом цикле развития биогельминта роль насекомоядных животных относительно невелика.

Ранее, в 2002-2004 гг., были сообщения, что в Центральном регионе России обнаружены личиночные формы E. multilocularis у 4 видов промежуточных хозяев: ондатры (Ondatra zibethicus), лесной мышовки (Sicista betulina), водяной (Arvicola amphibius) и рыжей полевок (Myodes glareolus). Грызуны были отловлены на территории Рязанского региона [3, 11]. За вышеприведенный период (2002-2004) исследовано более 427 экземпляров грызунов. Экстенсивность инвазии E. multilocularis у ондатр составила 10,9%, у лесных мышовок и водяных полевок - по 2,0%, а у рыжих полевок - 1,2%. В печени хозяина зарегистрировано от 1 до 4 паразитарных кист. Обнаруженные метацестоды многокамерного цепня оказались фертильными. Среди людей альвеолярный гидатидоз регистрируется в единичных случаях в Брянской, Калужской, Рязанской и Московской областях [12, 13]. Медицинская статистика фиксирует факты тесного контакта человека с бродячими и охотничьими собаками, сбора диких ягод и грибов, туристических походов в лесные массивы.

Морфологические и генетические исследования имаго цестод E. multilocularis, изъятых из диких плотоядных животных природного биоценоза Центральной России, показали их принадлежность к азиатскому генотипу [3, 14].

Альвеолярный гидатидоз печени речного бобра, вызванный возбудителем E. multilocularis, в Европе отмечают относительно редко [10, 15]. Паразитарные кисты гельминта оказывались фертильными и инвазионно-способными.

В проведенном исследовании представляет интерес то, что киста альвеококка у бобра находилась на завершающей стадии обызвествления. Учитывая продолжительность жизни бобров (промежуточный хозяин), гидатида вскоре полностью погибла бы, если бы зверя не добыли промысловики. Известно, что рацион питания бобра классифицируется на древесный (в зимний период) и зеленый вегетационный (в летний период) [16]. В теплый сезон года для животного доступно более 67 лекарственных и ядовитых прибрежных растений [17]. Возможно, такие изменения в характере в питании приводят к значительным изменениям в физиологии организма грызуна и изгнанию паразита. Исследуя физиологию пищеварения и растительный рацион питания зверя, вероятно, можно будет использовать полученные знания в разработке терапевтического подхода для избавления человека от опасного возбудителя гидатидозной болезни.

Заключение

В естественных условиях в Центральном регионе России среди животных встречаются случаи заражения альвеолярным гидатидозом (E. multilocularis). Инвазия формируется в кругу как промысловых, так и диких микромаммалий, преимущественно семейства хомячковых. Неблагополучие до данному зоонозу за непродолжительный период времени отмечено в 2 областях региона: Калужской и Рязанской. В настоящее время паразитарные кисты обнаруживают у 5 видов грызунов, в том числе у речного бобра (Castor fiber). Локализация метацестод при естественном заражении животных - чаще всего в печени. Мониторинговые исследования особенностей эпизоотологии инвазии у грызунов в природе могут стать основным базисом для разработки профилактических мероприятий альвеолярного гидатидоза.

Благодарности. Автор выражает благодарность сотрудникам государственных и частных обществ охотников и рыболовов Владимирской, Московской и Рязанской областей за предоставление биологического материала для научно-биологических исследований.

ЛИТЕРАТУРА

1. Бессонов А.С. Альвеолярный эхинококооз и гидатидоз. Москва, 2003. 335 с.

2. Ястреб В.Б., Бессонов А.С., Андреянов О.Н. Методические рекомендации по лабораторной диагностике цистного (Echincoccus granulosus) и альвеолярного (Echinococcus multilocularis) эхинококкозов и гидатидозов животных // Труды Всероссийского НИИ гельминтологии имени К.И. Скрябина. 2005. Т. 41. С. 453-462.

3. Коваленко Ф.П., Перчун Н.И., Дарченкова Н.Н. и др. Заболеваемость гидатидозами (цистным и альвеолярным) населения и сельскохозяйственных животных в Российской Федерации в 1989-2002 гг. // Труды Всероссийского НИИ гельминтологии имени К.И. Скрябина. 2005. Т. 41. С. 192-211.

4. Шайкенов Б.Ш. Биология возбудителей трихинеллеза и альвеолярного эхинококкоза. Алматы : Fылым, 2003. 308 с. ISBN 9965-07-244-2.

5. Виноградов B.C., Громов И.М. Краткий определитель грызунов фауны СССР. Ленинград : Наука, 1984. 140 с.

6. Крускоп С.В. Млекопитающие Подмосковья. Москва, 2002. 172 с.

7. Ивашкин В.М., Контримавичус В.А., Назарова В.С. Методы сбора и изучения гельминтов наземных млекопитающих. Москва : Наука, 1971. 121 с.

8. Санитарно-эпидемиологические правила СП 1.3.2518-09 "Безопасность работы с микроорганизмами III-IV групп патогенности (опасности) и возбудителями паразитарных болезней". Дополнения и изменения № 1 к СП 1.3.2322-08 (утв. постановлением Главного государственного санитарного врача РФ от 02.06.2009 № 42).

9. Lee B.-W., Jeon B.-S., Kim H.-S., Kim H.-C., Yoon B.-I. Cysticercus fasciolaris infection in wild rats (Rattus norvegicus) in Korea and formation of cysts by remodeling of collagen fibers // J. Vet. Diagn. Invest. 2016. Vol. 28, N 3. Р. 263-270. DOI: https://doi.org/10.1177/1040638716643129

10. Ромашов Б.В. Гельминты речных бобров: Castor fiber и Castor сanadensis. Воронеж : Воронежский ГАУ, 2015. 214 с. ISBN 978-5-7267-0778-5.

11. Андреянов О.Н. Исследование зараженности некоторых видов хищных животных возбудителем Echinococcus multilocularis в средней полосе России // Инфекция и иммунитет. 2020. Т. 10, № 1. С. 193-196. DOI: https://doi.org/10.15789/2220-7619-EEM-1182

12. О заболеваемости эхинококкозом и альвеококкозом в Российской Федерации: письмо Роспотребнадзора от 24.12.2013. № 01/14780-13-32. [Электронный ресурс]. URL: http://rospotrebnadzor.ru/documents/details.php?ELEMENT_ID=1097 (дата обращения: 15.11.2022).

13. Тумольская Н.И., Завойкин В.Д., Мазманян М.В., Сергиев В.П. Альвеолярный эхинококкоз в Европейской части России // Медицинская паразитология и паразитарные болезни. 2013. № 2. С. 36-37.

14. Konyaev S.V., Yanagida T., Nakao M. et al. Genetic diversity of Echinococcus spp. in Russia // Parasitology. 2013. Vol. 140, N 13. P. 1637-1647. DOI: https://doi.org/10.1017/S0031182013001340; PMID: 23985385.

15. Janovsky M., Bacciarini L., Sager H., Gröne A., Gottstein B. Echinococcus multilocularis in a European Beaver from Switzerland // J. Wildl. Dis. 2002. Vol. 38, N 3. P. 618-620. DOI: https://doi.org/10.7589/0090-3558-38.3.618

16. Скалон В.Н. Речные бобры Северной Азии. Материалы к познанию фауны и флоры СССР. Новая серия, Отдел зоологический. Москва : Изд-во Московского общества испытателей природы, 1951. Вып. № 25 (XL). 196 c.

17. Дежкин В.В., Дьяков Ю.В., Сафонов В.Г. Бобр. Москва : Агропромиздат, 1986. 256 с.

Материалы данного сайта распространяются на условиях лицензии Creative Commons Attribution 4.0 International License («Атрибуция - Всемирная»)

ГЛАВНЫЙ РЕДАКТОР
Горелов Александр Васильевич
Академик РАН, доктор медицинских наук, заведующий кафедрой инфекционных болезней и эпидемиологии НОИ «Высшая школа клинической медицины им. Н.А. Семашко» ФГБОУ ВО «Российский университет медицины» Минздрава России, профессор кафедры детских болезней Клинического института детского здоровья им. Н.Ф. Филатова ФГАОУ ВО Первый МГМУ им И.М. Сеченова Минздрава России (Сеченовский Университет), заместитель директора по научной работе ФБУН ЦНИИ Эпидемиологии Роспотребнадзора (Москва, Российская Федерация)

Журналы «ГЭОТАР-Медиа»