Молекулярно-биологический мониторинг возбудителей гнойного бактериального менингита на современном этапе

РезюмеВ статье представлены результаты эпидемиологического мониторинга за возбудителями гнойных бактериальных менингитов. Проведен анализ этиологической структуры гнойных бактериальных менингитов и эпидемиологических особенностей менингококковой и пневмококковой инфекции. Рассмотрена серо-групповая характеристика N. meningitidis, серотиповая структура S. pneumoniae и приведены результаты мультилокусного секвенирования-типирования штаммов N. meningitidis. Обоснована роль молекулярно-биологических методов типирования в эпидемиологическом мониторинге возбудителей гнойных бактериальных менингитов.

Ключевые слова:бактериальные менингиты, генерализованная менингококковая инфекция, N. meningitidis, S. pneu¬moniae, полимеразная цепная реакция, мультилокусное секвенирование-типирование

Инфекционные болезни: новости, мнения, обучение. 2018. Т. 7. № 1. С. 93-99.
DOI: 10.24411/2305-3496-2018-00012


Гнойные бактериальные менингиты (ГБМ) - группа тя­желых инфекционных заболеваний центральной нерв­ной системы (ЦНС). На долю ГБМ приходится 33% всех инфекционных поражений ЦНС [1]. Актуальность проблемы ГБМ определяется высокими показателями за­болеваемости, длительными сроками госпитализации, ри­ском неврологических осложнений и стабильно высокими показателями летальности. Среди различных этиологиче­ских форм ГБМ высокую медицинскую и социально-эко­номическую значимость представляют генерализованные формы менингококковой инфекции (ГФМИ) в связи с тем, что, несмотря на относительно низкий уровень заболева­емости, суммарный экономический ущерб от всех заре­гистрированных случаев ГФМИ в течение года значитель­но превосходит таковой от многих других инфекционных заболеваний [2].

Наиболее часто ГБМ вызывают N. meningitidis, H. influen­zae, S. pneumoniae, которые ответственны за 85% этиоло­гически расшифрованных случаев заболевания [3]. Важ­ным инструментом эпидемиологического надзора за ГБМ является определение этиологического агента [4], что также имеет важное клиническое значение с точки зре­ния выбора тактики терапии. Перспективным методом для диагностики ГБМ в настоящее время является определе­ние специфических фрагментов ДНК возбудителей в био­логическом материале (БМ) с использованием полимеразной цепной реакции (ПЦР) [5, 6]. Использование методик, основанных на ПЦР с гибридизационно-флуоресцентной детекцией продуктов амплификации в режиме реального времени (ПЦР-РРВ), позволяет одновременно определять специфические фрагменты ДНК нескольких возбудителей. В России зарегистрированы следующие наборы реаген­тов для постановки ПЦР: "АмплиСенс® N. meningitidis/ H. influenzae/S. pneumoniae-FL" (РУ № ФСР 2011/12380 от 25.11.2011) для выявления N. meningitidis, S. pneumoniae и H. influenzae, а также для определения других микро­организмов, способных вызвать ГБМ, в числе которых, на­пример, L. monocytogenes, S. aureus (РУ № РЗН 2015/3111 от 18.09.2015 и № ФСР 2012/13998 от 29.10.2012).

Поскольку далеко не все представители видов N. meningitidis и S. pneumoniae способны вызвать ГБМ, важным на­правлением при проведении эпидемиологического надзора является молекулярно-биологический мониторинг, вклю­чающий идентификацию возбудителей генерализованных форм инфекции, в том числе обладающих резистентностью к антибактериальным препаратам, и выявление их принад­лежности к отдельным клонам или клональным комплексам. С этой целью используют ряд методических подходов, позво­ляющих определить антигенную и генетическую характери­стики бактерий. Молекулярно-биологические методы могут быть использованы при проведении как проспективного, так и ретроспективного эпидемиологического анализа ГБМ [7-10].

Характеристика антигенных свойств капсульных по­лисахаридов N. meningitidis, S. pneumoniae и H. influenzae является ключевым элементом внутривидовой классифи­кации этих бактерий и основным объектом детекции при проведении микробиологического мониторинга циркулиру­ющих возбудителей, проводимых в рамках эпидемиологи­ческого надзора за ГБМ. Известно, что среди бактерий вида H. influenzae возбудителем ГБМ является только 1 серо-тип - H. influenzae типа b, выявление которого позволяет подтвердить этиологию заболевания. В то же время при проведении микробиологического мониторинга штаммов N. meningitidis и S. pneumoniae как этиологических агентов ГБМ возникает необходимость в определении нескольких серологических вариантов капсульного полисахарида.

Распространенным способом проведения генетической характеристики возбудителей ГБМ является метод мультилокусного секвенирования-типирования (МЛСТ), основанный на секвенировании нуклеотидных последовательностей не­скольких генов "домашнего хозяйства" (Гены "домашнего хозяйства" (англ. housekeeping genes) - это гены, необходимые для поддержания важнейших жизненных функций микро-/макроорганизма.). Метод МЛСТ де­монстрирует высокую дискриминирующую способность по сравнению с традиционными микробиологическими, серо­логическими методами и позволяет объединять результаты в общедоступную базу данных PubMLST через Интернет, что дает возможность сопоставлять данные, полученные ис­следователями на разных территориях и проводить оценку их эпидемической опасности. Применение метода МЛСТ N. meningitidis успешно зарекомендовало себя при характе­ристике основных возбудителей ГБМ на территории России [11-14].

Цель работы - определение этиологической структуры ГБМ, анализ результатов молекулярно-биологического мо­ниторинга штаммов N. meningitidis и S. pneumoniae с харак­теристикой клональных комплексов N. meningitidis, в том числе штаммов клонального комплекса ST-11 compLex/ET-37, с помощью массового параллельного секвенирования.

Материал и методы

В рамках проведенной работы были исследованы об­разцы биологического материала (кровь и спинномозговая жидкость) от 468 пациентов с ГБМ. Все пациенты, включенные в исследование, проходили стационарное лечение в ГБУЗ "Инфекционная клиническая больница № 2" Департа­мента здравоохранения г. Москвы с июня 2011 г. по январь 2017 г.

Для экстракции ДНК из образцов биологического ма­териала использовали набор реагентов РИБО-преп (про­изводство ФБУН "Центральный научно-исследователь­ский институт эпидемиологии" Роспотребнадзора). Для определения ДНК возбудителей ГБМ применяли набор реагентов "АмплиСенс® N. meningitidis/H. influenzae/ S. pneumoniae-FL" РУ № ФСР 2011/12380 от 25.11.2011 (производство ФБУН "Центральный научно-исследова­тельский институт эпидемиологии" Роспотребнадзора). Для определения серогрупповой принадлежности менин­гококков, обнаруженных в образцах от 272 пациентов, использовали разработанную в ФБУН "Центральный научно-исследовательский институт эпидемиологии" Роспотребнадзора методику на основе ПЦР-РРВ для опреде­ления серогрупп А, В, С и W N. meningitidis [15]. Серотип S. pneumoniae, обнаруженных в биологическом материале от 46 пациентов, определяли с помощью метода на основе ПЦР-РРВ, позволяющего дифференцировать 16 серотипов S. pneumoniae, входящих в состав 10- и тринадцати­валентных вакцин, разработанного в ФБУН "Центральный научно-исследовательский институт эпидемиологии" Роспотребнадзора [16]. Данный метод регулярно применяют в ГБУЗ "Инфекционная клиническая больница № 2" Депар­тамента здравоохранения г. Москвы при проведении молекулярно-биологического мониторинга возбудителей ГБМ [17-21]. Амплификацию проводили на приборах RotorGene 3000/6000 (Corbettr Research, Австралия). МЛСТ осущест­вляли согласно международным требованиям по методике К.О. Миронова и соавт. [14]. Секвенирование проводили с помощью реагентов и оборудования фирмы "Applied Biosystems" (США). Массовое параллельное секвенирование проводили на платформе MiSeq c использованием на­бора MiSeqReagentKitv2, 500-cycles ("Illumina", США).

Результаты и обсуждение

По данным исследований, проведенных в ФБУН "Цен­тральный НИИ эпидемиологии" Роспотребнадзора в разные годы, большинство случаев ГБМ с установленным этиоло­гическим агентом приходится на долю N. meningitidis, ко­торый с одинаковой частотой вызывает ГФМИ у взрослых и детей [22-25]. На втором месте в качестве этиологического агента ГБМ у взрослых пациентов находится S. pneumoniae, в то время как у детей - H. influenzae типа b; при этом зна­чительная доля случаев ГБМ остается нерасшифрованной. Этиологическая структура ГБМ у пациентов, госпитализиро­ванных на протяжении 2011-2016 гг. в ГБУЗ "Инфекционная клиническая больница № 2" Департамента здравоохранения г. Москвы, представлена в таблице.

Разработанная методика позволила определить серогруппу N. meningitidis в 98% случаев ГФМИ [15, 26]. По дан­ным проведенных исследований [20, 26], на территории Москвы в течение последних 5 лет наблюдается устойчивая тенденция к снижению удельного веса N. meningitidis серогруппы А, в 2014-2015 гг. - повышение доли N. meningitidis B и W серогрупп. При этом колебание доли N. meningitidis серогруппы C не позволяет говорить о каких-либо выраженных закономерностях (см. рисунок).

Полученные данные свидетельствуют о том, что на терри­тории Москвы происходит смена доминирующей серогруппы N. meningitidis. В то же время эпидемиологическую насто­роженность вызывает увеличение доли N. meningitidis серо-группы W (до 30%), учитывая, что менингококк данной серогруппы неоднократно выделяли в течение эпидемических подъемов заболеваемости во многих странах мира [27-29]. В связи с этим возникает необходимость проведения до­полнительных исследований, направленных на определение генетических характеристик менингококка и идентифика­цию гипервирулентных клональных комплексов N. meningitidis, ассоциированных с осложнением эпидемической об­становки.

В рамках молекулярно-биологического мониторинга штаммов S. pneumoniae, циркулировавших на террито­рии Москвы с 2011 по 2014 г., исследованы 46 образ­цов ДНК возбудителя, полученных от пациентов с ГБМ [21]. В 31 (67%) образце ликвора был определен серотип пневмококка. Выявлено следующее распределение серотипов: 6 образцов ликвора содержали специфиче­ские фрагменты ДНК пневмококка серотипа 23F, 4 - серотипа 14, по 3 образца содержали ДНК серотипов 6BA и 18, по 2 образца - серотипов 4, 7FA, 11AD, 19F, 15AF, по одному -серотипов 1, 3, 5, 18 и 19A. Специфические фрагменты ДНК пневмококка серотипов 2, 9VA и 9NL не обнаружены.

Большое значение исследователи придают изучению характеристик штаммов N. meningitidis серогруппы A, по­скольку подъемы заболеваемости ГФМИ в России в преды­дущие годы были связаны с циркуляцией менингококка этой серогруппы. В связи с этим было проведено иссле­дование генетических свойств 20 образцов, содержащих ДНК N. meningitidis серогруппы А методом МЛСТ. В связи с увеличением доли менингококка серогруппы W в этио­логической структуре ГФМИ были исследованы 18 образцов, содержащих ДНК N. meningitidis этой серогруппы. Все образцы были получены от пациентов с ГФМИ, прохо­дивших стационарное лечение с июня 2011 г. по декабрь 2015 г. [26]. Большинство штаммов менингококка серогруппы A имели сиквенс-тип ST-75 (19 образцов из 20), при этом все они принадлежали к клональному комплексу ST-1 complex/subgroup I/II, генетической субгруппе Х. Циркуля­ция менингококка серогруппы А, входящего в данный клональный комплекс, характерна для межэпидемического пе­риода и не ассоциирована с осложнениями эпидемической обстановки.

При проведении МЛСТ штаммов менингококка серогруппы W в 8 образцах из 10 была обнаружена ДНК, отно­сящаяся к клональному комплексу ST-11 complex/ET-37 complex и в подавляющем большинстве имеющая сиквенс-тип ST-11 (15 образцов). Однократно были определены 2 новых сиквенс-типа, не встречавшихся ранее: ST-11585 и ST-11589. Клональный комплекс ST-11 complex/ET-37 complex является вторым по величине клональным ком­плексом, характерным для зарубежных штаммов, а входящие в этот клональный комплекс N. meningitidis неоднократно выделяли в периоды эпидемического неблагополучия в раз­ных странах. Выявление представителей данного гиперви­рулентного клонального комплекса диктует необходимость более широкой генетической характеристики этих штаммов.

Для поиска маркеров, ассоциированных с повышенными вирулентными свойствами отдельных представителей клонального комплекса ST-11/ET-37, был использован метод массового параллельного секвенирования [30]. Использова­ние данного метода позволяет увеличить объем получаемых данных и дискриминирующую способность генотипирования. Данный подход обладает большими возможностями для идентификации наиболее эпидемически опасных клонов, которые предположительно могут обладать селективными преимуществами и эволюционировать внутри клональных комплексов, обозначаемых с помощью метода МЛСТ. Прове­дено генотипирование с помощью массового параллельного секвенирования 4 образцов ДНК N. meningitidis серогруппы W, полученных от пациентов с ГФМИ. Результаты исследова­ния позволяют считать, что на территории Москвы в 2016 г. циркулировали как минимум 2 клона N. meningitidis серогруппы W, входящие в клональный комплекс ST-11 complex/ ET-37 complex.

Заключение

Дальнейшие исследования должны быть направлены на повышение уровня этиологической расшифровки ГБМ путем расширения спектра определенных возбудителей ГБМ с раз­работкой новых диагностических наборов реагентов на ос­нове ПЦР-РРВ. В рамках оперативного эпидемиологического надзора важно продолжать наблюдение за изменениями в серогрупповой структуре N. meningitidis и соотношением серо­типов S. pneumoniae. Необходим дальнейший молекулярно-биологический мониторинг за гипервирулентными клонами менингококков серогруппы W с помощью метода МЛСТ и массового параллельного секвенирования для оценки эпи­демической обстановки на наблюдаемой территории.

ЛИТЕРАТУРА

1. Филатова Т.Г. Бактериальные гнойные менингиты : учебное по­собие для студентов 6-го курса (специальности 060101 "Лечебное дело", 060103 "Педиатрия"). Петрозаводск : Изд-во ПетрГУ, 2014. 42 с.

2. Шаханина И.Л. Экономическая значимость менингококковой ин­фекции в современной России // Эпидемиология и инфекционные бо­лезни. 2009. № 4. C. 4-5.

3. Королева М.А., Белошицкий Г.В., Закроева И.М., Королева И.С. Этиологическая структура гнойных бактериальных менингитов в Рос­сийской Федерации в 2013 году // Материалы VII Ежегодного Всерос­сийского Конгресса по инфекционным болезням с международным уча­стием. М., 2015. С. 169-170.

4. Королева И.С., Белошицкий Г.В. Менингококковая инфекция и гнойные бактериальные менингиты: руководство по лабораторной диагностике / под ред. В.И. Покровского. М., 2007. 112 с.

5. Платонов А.Е., Шипулин Г.А., Королева И.С., Шипулина О.Ю. Пер­спективы диагностики бактериальных менингитов // Журн. микробиол. 1999. № 2. С. 71-76.

6. Тютюнник Е.Н. Использование полимеразной цепной реакции для диагностики и прогнозирования течения менингитов : дис. ... канд. мед. наук. М., 2001. 143 с.

7. Миронов К.О., Животова В.А., Матосова С.В., Шипулина О.Ю. и др. Генотипирование Neisseria meningitidis, вызвавших генерализованные формы менингококковой инфекции на территории Москвы в 2016 году // Материалы IX Всероссийской научно-практической конференции с международным участием "Молекулярная диагностика 2017". М., 2017. Т. 1. С. 223-225.

8. Миронов К.О., Королева М.А., Платонов А.Е., Королева И.С. и др. Генетическое типирование Neisseria meningitidis, циркулирующих в ре­гионах России // Эпидемиология и инфекционные болезни. Актуальные вопросы. 2013. № 2. С. 36-40.

9. Королева И.С., Покровский В.И., Миронов К.О., Платонов А.Е. и др. Эпидемиологический мониторинг за гнойными бактериальными менингитами в историческом и современном аспектах // Эпидемиология и инфекционные болезни. Актуальные вопросы. 2014. № 2. С. 52-56.

10. Achtman M., van der Ende A., Zhu P. et al. Molecular epidemiology of serogroup a meningitis in Moscow, 1969 to 1997 // Emerg. Infect. Dis. 2001. Vol. 7, N 3. P. 420-427.

11. Миронов К.О., Шипулин Г.А., Королева И.С., Платонов А.Е. Гено­типирование Neisseria mening'tidis // Эпидемиология и инфекционные болезни. 2009. № 4. С. 18-21.

12. Миронов К.О., Платонов А.Е., Королева И.С., Тагаченкова Т.А. и др. Генетическая характеристика московских штаммов Neisseria meningitidis // Клин. микробиол. и антимикроб. химиотер. 2011. Т. 13. № 2. С. 135-148.

13. Миронов К.О. Клональные комплексы Neisseria meningitidis, циркулирующие на территории России, и их роль в эпидемическом про­цессе менингококковой инфекции // Эпидемиология и инфекционные болезни. Актуальные вопросы. 2016. № 6. С. 52-61.

14. Миронов К.О., Платонов А.Е., Королева И.С., Шипулин Г.А. Анализ московской популяции штаммов Neisseria meningitidis методом мультилокусного секвенирования-типирования // Журн. микробиол. 2006. № 2. С. 31-36.

15. Миронов К.О., Платонов А.Е., Дрибноходова О.П., Кусева В.И. и др. Методика для определения серогрупп A, B, C и W Neisseria meningitides методом ПЦР в режиме реального времени // Журн. микробиол. 2014. № 6. С. 35-42.

16. Миронов К.О., Платонов А.Е., Дунаева Е.А., Шипулин Г.А. Разра­ботка и клиническая апробация методики для определения серотипов Streptococcus pneumoniae методом ПЦР в режиме реального времени // Материалы VIII Всероссийской научно-практической конференции с международным участием "Молекулярная диагностика 2014". М., 2014. С. 418-419.

17. Миронов К.О., Матосова С.В., Дрибноходова О.П., Шипулина О.Ю. и др. Определение серогрупп Neisseria meningitidis, вызвавших гене­рализованные формы менингококковой инфекции на территории Мо­сквы в 2012-2013 гг., с помощью ПЦР в режиме реального времени // Материалы VIII Всероссийской научно-практической конференции с международным участием "Молекулярная диагностика 2014". М., 2014. С. 417-418.

18. Миронов К.О., Матосова С.В., Паркина Н.В., Шипулина О.Ю. и др. Определение серогрупп Neisseria meningitidis, выделенных из био­логического материала пациентов с генерализованными формами менингококковой инфекции методом полимеразной цепной реакции в ре­жиме реального времени // Материалы VII Ежегодного Всероссийского конгресса по инфекционным болезням с международным участием. М., 2015. С. 215-216.

19. Матосова С.В., Миронов К.О., Смирнова В.С., Шипулина О.Ю. и др. Определение серогрупп Neisseria meningitidis, выделенных из биологического материала пациентов с генерализованными фор­мами менингококковой инфекции на территории Москвы в 2015 го­ду, методом полимеразной цепной реакции в режиме реального времени // Материалы VIII Ежегодного Всероссийского конгресса по инфекционным болезням с международным участием. М., 2016. С. 178.

20. Матосова С.В., Миронов К.О., Смирнова В.С., Шипулина О.Ю. и др. Характеристика серогруппового распределения Neisseria meningitidis, вызвавших генерализованные формы менингококковой инфекции на территории Москвы в 2016 году // Материалы IX Всероссийской научно-практической конференции с международным участием "Молекулярная диагностика 2017". М., 2017. С. 240-241.

21. Миронов К.О., Матосова С.В., Паркина Н.В., Шипулина О.Ю. и др. Определение серотипов Streptococcus pneumoniae, выделенных из образцов спинномозговой жидкости пациентов с гнойными ме­нингитами, методом полимеразной цепной реакции в режиме реаль­ного времени // Материалы VII Ежегодного Всероссийского конгресса по инфекционным болезням с международным участием. М., 2015. С. 224-225.

22. Матосова С.В., Ракчеева О.В., Шипулина О.Ю., Платонов А.Е. и др. Этиологическая диагностика менингитов и менингоэнцефалитов у детей методом ПЦР // Материалы VIII Всероссийской научно-практи­ческой конференции с международным участием "Молекулярная диа­гностика 2014". М., 2014. С. 422-423.

23. Матосова С.В., Паркина Н.В., Шипулина О.Ю., Платонов А.Е. и др. Расшифровка этиологии менингитов, менингоэнцефалитов и энце­фалитов методом ПЦР // Материалы VIII Всероссийской научно-прак­тической конференции с международным участием "Молекулярная диа­гностика 2014". М., 2014. С.424-425.

24. Матосова С.В., Паркина Н.В., Шипулина О.Ю., Чернышов Д.В. и др. Этиологическая диагностика гнойных менингитов и менингоэнцефалитов методом полимеразной цепной реакции в режиме реального времени // Материалы VII Ежегодного Всероссийского конгресса по инфекционным болезням с международным участием. М., 2015. С. 216.

25. Матосова С.В., Смирнова В.С., Шипулина О.Ю. Молекулярно-биологические методы в этиологической диагностике гнойных менингитов и менингоэнцефалитов // Лаб. служба. 2017. T. 6, № 3. С. 98.

26. Матосова С.В., Миронов К.О., Платонов А.Е., Шипулина О.Ю. и др. Молекулярно-биологический мониторинг Neisseria meningitidis на территории Москвы в период с 2011 по 2015 г. // Эпидемиология и ин­фекционные болезни. Актуальные вопросы. 2016. № 2. С. 4-9.

27. AguiLera J.-F., Perrocheau A., Meffre C. et aL. Outbreak of Serogroup W135 MeningococcaL Disease after the Hajj PiLgrimage, Europe, 2000 // Emerg. Infect. Dis. 2002. VoL. 8, N 8. P. 761-767.

28. Mustapha M.M., Marsh J.W., Harrison L.H. GLobaL epidemioLogy of capsuLar group W meningococcaL disease (1970-2015): MuLtifocaL emer­gence and persistence of hyperviruLent sequence type (ST)-11 cLonaL com­pLex // Vaccine. 2016. VoL. 34, N 13. P. 1515-1523.

29. Mayer L.W., Reeves M.W., AL-Hamdan N. et aL. Outbreak of W135 meningococcaL disease in 2000: not emergence of a new W135 strain but cLonaL expansion within the eLectrophoretic type-37 compLex // J. Infect. Dis. 2002. VoL. 185, N 11. P. 1596-1605.

30. Миронов К.О., Животова В.А., Матосова С.В., Кулешов К.В. и др. Ха­рактеристика Neisseria meningitides серогруппы W, циркулирующих на тер­ритории Москвы, с помощью массового параллельного секвенирования // Эпидемиология и вакцинопрофилактика. 2017. № 4. (95). С. 33-37.

Материалы данного сайта распространяются на условиях лицензии Creative Commons Attribution 4.0 International License («Атрибуция - Всемирная»)

ГЛАВНЫЙ РЕДАКТОР
Горелов Александр Васильевич
Академик РАН, доктор медицинских наук, заведующий кафедрой инфекционных болезней и эпидемиологии НОИ «Высшая школа клинической медицины им. Н.А. Семашко» ФГБОУ ВО «Российский университет медицины» Минздрава России, профессор кафедры детских болезней Клинического института детского здоровья им. Н.Ф. Филатова ФГАОУ ВО Первый МГМУ им И.М. Сеченова Минздрава России (Сеченовский Университет), заместитель директора по научной работе ФБУН ЦНИИ Эпидемиологии Роспотребнадзора (Москва, Российская Федерация)

Журналы «ГЭОТАР-Медиа»